实验目的
1.能独立的进行细胞技术，会绘制生长曲线，了解细胞生长的发育特性。
2. 学习在科研中如何应用生长曲线。
实验原理
生长曲线的测定（计数法）是测定细胞绝对生长数的常用方法，也是判定细胞活力的重要指标，为培养细胞生物学特性的基本参数之一。一般细胞传代之后，经过短暂的悬浮然后贴壁，随后度过长短不同的潜伏期，即进入大量分裂的指数生长期。在细胞达到饱和密度后，停止生长，进入平顶期，然后退化衰亡。为了准确描述整个过程中的细胞数目的动态变化，需连续对细胞进行计数，通常计数7天。为精确起见，一般每次计数三瓶细胞并取平均值。典型的生长曲线可分为生长缓慢的潜伏期，成平台状的平顶期及退化衰亡四个部分。以存活细胞数对培养时间做图，即生长曲线。
生长曲线常用于测定药物等外来因素对细胞生长的影响。一般在对数期的1/3-1/2处加药。细胞技术的时间和次数依实验目的而定。
另外，测定生长曲线的常用方法还有MTT法。
实验步骤
1. 胰酶消化细胞（一般用三种细胞，本实验用Hep2，Mel，CHO，本实验组用CHO），用新培养基中止，制成细胞悬液，吹打均匀，计数。
2.根据计数结果，每个方瓶中接细胞3×105个，加3mL培养基。一种细胞接15瓶。用作对照组4瓶，三个药物梯度（5、10、15ug/mL）各三瓶，2瓶备用。（本实验组因为细胞有限，故只接了7瓶，对照四瓶，10ug/mL三瓶）
3.24h后，计数1瓶细胞（相当于所有的瓶子的细胞都以这个数计算），分别加药。
4.48h、72h、96h后，分别计数，每个药物梯度和对照组各计一瓶。
5.计数是，用胰酶消化稍过一点。用原培养基中止消化。（这样做可以防止细胞损失）用27uL细胞和3uL台盼兰染色计数活细胞。要定容培养基的量（加入胰酶后的体积）第5步不用再超净台中完成。
6.以细胞数为纵轴，以时间为横轴作图。